Стаття

Отримано 13.09.2025

Доопрацьовано 09.02.2026

Прийнято 31.03.2026

Опубліковано 13.04.2026

Взято з Том 30, № 1, 2026

Сторінки 35 -45

Badenko, A. (2026). Influence of clonex and indole-3-butyric acid on the rhizogenesis of Picea pungens f. glauca cuttings. Ukrainian Black Sea Region Agrarian Science, 30(1), 35-45. https://doi.org/10.56407/bs.agrarian/1.2026.35

Вплив препарату clonex та індоліл-3-масляної кислоти на ризогенез живців Picea pungens f. glauca

Андрій Баденко

Метою дослідження було кількісне оцінювання впливу різних концентрацій індоліл-3-масляної кислоти та гелевих препаратів на інтенсивність ризогенезу напівздерев’янілих живців Picea pungens f. glauca з визначенням найбільш ефективних варіантів обробки. У трирічному дослідженні (2023-2025 рр.) досліджено ефективність препаратів Clonex Green, Clonex Purple, Clonex Red, а також водних розчинів індолілмасляної кислоти (ІМК) у концентраціях 1000 мг/л, 3000 мг/л та 5000 мг/л при розмноженні напівздерев’янілих живців Picea pungens f. glauca. Живці довжиною 8-12 см заготовляли з маточних рослин віком до 10 років. Живці висаджували в субстрат, який складався із суміші річкового піску та верхового торфу у співвідношенні 1:1. За результатами досліджень встановлено, що застосування препаратів Clonex та ІМК істотно підвищує відсоток укорінення порівняно з контрольним варіантом, де середній показник становив лише 5,6 %. Найвищу ефективність продемонстрував гелевий препарат Clonex Purple, використання даного препарату забезпечило укорінення живців 37,8 %. Високу результативність (28,9 %) також зафіксовано при застосуванні Clonex Green та водного розчину ІМК у концентрації 1000 мг/л. Виявлено, що подальше підвищення концентрації чистої ІМК до 3000 мг/л призводить до зниження показника до 24,4 %, а застосування концентрації ІМК 5000 мг/л спричиняє пригнічення ризогенезу (11,1 %), що свідчить про фітотоксичну дію. Встановлено перевагу гелевих форм стимуляторів (Clonex) над водними розчинами, що пояснюється пролонгованим контактом діючої речовини з основою живця, її поступовим вивільненням та захистом від вимивання із субстрату. Математична обробка даних методом дисперсійного аналізу підтвердила статистичну достовірність отриманих результатів (НІР0,05 у межах 1,71-1,83). Отримані дані дозволяють рекомендувати оптимальні концентрації стимуляторів для підвищення виходу якісного садивного матеріалу декоративних хвойних порід

вегетативне розмноження; укорінення рослин; ауксини; адвентивні корені; стимулятори коренеутворення
  1. Abdulraahman, Y.A., & Ayoub, M.Z. (2023). Effect of propagation dates, media and auxins treatments on rooting of Monterey cypress (Cupressus macrocarpa) semi-hard wood cuttings. Kirkuk University Journal for Agricultural Sciences, 14(3), 190-200. doi: 10.58928/ku23.14321.
  2. Abshahi, M., García-Morote, F.A., Zarei, H., Zahedi, B., & Rezaei Nejad, A. (2022). Improvement of rooting performance in stem cuttings of Savin Juniper (Juniperus sabina L.) as a function of IBA pretreatment, substrate, and season. Forests, 13(10), article number 1705. doi: 10.3390/f13101705.
  3. Aziz, R.R., Hama-Salih, F.M., & Noori, I.M. (2024). Rooting of hardwood cuttings of quince (Cydonia oblonga L.) as influenced by IBA and rooting substrate. Kufa Journal for Agricultural Sciences, 16(3), 24-40. doi: 10.36077/ kjas/2024/v16i3.11298.
  4. Çolak, S., İslam, A., Turan, A., Yılmaz, M., Karagöl, S., & Ayan, S. (2025). Determination of rooting rates of rootstock hazelnut (Corylus colurna L.) genotypes in wood cuttings. Karadeniz Fen Bilimleri Dergisi, 15(2), 833-842. doi: 10.31466/kfbd.1627895.
  5. Convention on Biological Diversity. (n.d.). Retrieved from https://www.cbd.int/convention/text.
  6. de Felice, F.E.F., Dias-Araujo, P.C., Pinheiro, E.S., & Vergara, C. (2024). Mini-cutting technique for the propagation of a Eucalyptus camaldulensis clone selected in a semiarid region. Forest Systems, 33(3), article number 20905. doi: 10.5424/fs/2024333-20905.
  7. El-Banna, M.F., Farag, N.B.B., Massoud, H.Y., & Kasem, M.M. (2023). Exogenous IBA stimulated adventitious root formation of Zanthoxylum beecheyanum K. Koch stem cutting: Histo-physiological and phytohormonal investigation. Plant Physiology and Biochemistry, 197, article number 107639. doi: 10.1016/j.plaphy.2023.107639.
  8. Harika, K., Sharma, C.L., Dilta, B.S., Verma, P., & Kumari, N. (2024). Effect of different IBA levels on growth and rooting of semi-hardwood cuttings in pomegranate cv. Kandhari. Journal of Experimental Agriculture International, 46(12), 152-161. doi: 10.9734/jeai/2024/v46i123120.
  9. Hasan, N.S., & Hammo, Y.H. (2021). Influence of IBA and media on rooting percentage and growth of semihardwood cuttings of red-tip photinia plant (photinia × fraseri). Journal of University of Duhok, 24(1), 141-150. doi: 10.26682/ajuod.2021.24.1.11.
  10. Ibrahim, M.A., Bosila, H.A., Hamza, M.A., Ibrahim, I.M.E., & Abdel-Gawad, A.I.M. (2025). Effect of IBA and media on the anatomical structure and root formation in Zanthoxylum beecheyanum plant. Scientific Journal of Flowers & Ornamental Plants, 12(1), 1-9. doi: 10.21608/sjfop.2025.419632.
  11. Liu, S., Li, X., Xu, L., & Zhang, G. (2025). Hormone functions in adventitious root formation during cutting propagation of woody plants. Journal of Plant Research, 138(6), 907-914. doi: 10.1007/s10265-024-01602-8.
  12. Negri, I.S., Gómez Barreiro, P., Cockel, C., & Chapman, T. (2025). Factors affecting the vegetative propagation of ash (Fraxinus excelsior L.) from semi-hardwood and hardwood cuttings. New Forests, 56, article number 42. doi: 10.1007/s11056-025-10103-y.
  13. Oakes, A.D., Pilkey, H.C., & Powell, W.A. (2020). Improving ex vitro rooting and acclimatization techniques for micropropagated American chestnut. Journal of Environmental Horticulture, 38(4), 149-157. doi: 10.24266/ 0738-2898-38.4.149.
  14. Oğuztürk, G.E., Pulatkan, M., Alparslan, C., & Oğuztürk, T. (2025). Comparative evaluation and optimization of auxin type and concentration on rooting efficiency of Photinia × fraseri Dress stem cuttings using response surface methodology. Plants, 14(15), article number 2420. doi: 10.3390/plants14152420.
  15. Rasul, A.T., Ak, B.E., Abdulrahman, Y.A., & Hatipoğlu, İ.H. (2025). Investigation of the effects of rooting medium and IBA concentration on rooting and shoot development of Bougainvillea spp. cuttings. Journal of Tekirdag Agricultural Faculty, 22(1), 18-34. doi: 10.33462/jotaf.1341534.
  16. Sanz Gallego, M., Gascón, M.T., & Esteban Pascual, L.S. (2025). Optimization of vegetative propagation techniques for Juniperus communis L. under greenhouse conditions. International Journal of Plant Biology, 16(2), article number 57. doi: 10.3390/ijpb16020057.
  17. Silva Filho, J.B., Ferreira, A.R., & Jr. McGiffen, M.E. (2026). Interactive effects of root-promoting treatments and media on clonal propagation of two western pine species. Plants, 15(2), article number 237. doi: 10.3390/ plants15020237.
  18. Swathi, S., Gupta, G., Singh, S., & Bhukya, R. (2025). Effect of IBA on rooting behaviour of Melia dubia cuttings. Indian Forester, 151(5), 436-443. doi: 10.36808/if/2025/v151i5/170084.
  19. Trueman, S.J., Hung, C.D., & Wendling, I. (2021). Propagation of forest trees by stem cuttings: Effects of plant growth regulators. Forests, 12(3), article number 311. doi: 10.3390/f12030311.
  20. Younessi-Hamzekhanlu, M., Razzak, A., & Jakuš, R. (2026). Utilizing diverse propagation approaches to advance Norway spruce breeding and reforestation. Journal of Forestry Research, 37, article number 46. doi: 10.1007/ s11676-025-01983-z.
  21. Zala, Y.P., & Masu, M.M. (2025). Effect of IBA and growing media on root and shoot parameters of cuttings in Ficus benjamina. International Journal of Advanced Biochemistry Research, 9(8), 536-540. doi: 10.33545/26174693.2025. v9.i8Si.5203.