Отримано 09.01.2023
Доопрацьовано 14.03.2023
Прийнято 25.04.2023
Взято з Том 27, № 2, 2023
Сторінки 21 -27
Анотація
Застосування гербіцидів може суттєво впливати на процеси фотосинтезу рослин, оскільки призводить до пригнічення утворення пігментів, погіршує транспорт електронів у дихальному ланцюзі та фіксацію вуглецю. Мета дослідження - визначити вплив застосування гербіцидів на забур'яненість та фотосинтетичну активність сої. На основі польового дослідження в умовах Навчально-наукового центру Львівського національного університету природокористування встановлено залежність урожайності сої від рівня забур'яненості посівів культури. Найбільшу врожайність сої - 29,0 т/га було отримано при застосуванні гербіциду Primekstra TZ Gold 500 SC c.s. (4,5 л/га), найменшу - 27,3 т/га серед варіантів досліду було отримано при післясходовому застосуванні гербіциду Pulsar s.c. (1 л/га). Застосування гербіциду Primekstra TZ Gold 500 SC c.s. не впливало на інтенсивність фотосинтезу, а кількість пігментів у листках сої достовірно не відрізнялася від показника на контролі. Застосування препаратів Kommand k.e. та Pulsar s.c. призводило до незначного зниження кількості пігментів у перші дні після внесення та поступової їх стабілізації. Застосування гербіциду Concur c.s. призводило до послаблення фотосинтетичної активності та зменшення кількості пігментів. Це свідчить про те, що діюча речовина метрибузин не є абсолютно селективною щодо впливу на рослини сої, тобто в разі її застосування існує ймовірність пригнічення культури. Практична значимість одержаних результатів полягає у розкритті можливостей вибору ефективних гербіцидів з підвищеною селективною фітотоксичністю, які забезпечують ефективний контроль чисельності бур'янів за мінімальної ймовірності негативного впливу гербіцидів на агроценоз сої
Ключові слова:
соя; пігменти; діюча речовина; фотосинтез; бур'яни; продуктивність[1] Banerjee, P., Venugopalan, V.K., Nath, R., Chakraborty, P.K., Gaber, A., Alsanie, W.F., Raafat, B.M., & Hossain, A. (2022). Seed priming and foliar application of nutrients influence the productivity of relay grass pea (Lathyrus sativus L.) through accelerating the photosynthetically active radiation (PAR) use efficiency. Agronomy, 12(5), 1125. doi: 10.3390/agronomy12051125.
[2] Braz, G.B.P., Freire, E.S., Pereira, B.C.S., dos Santos Farnese, F., de Freitas Souza, M., Loram-Lourenço, L., & de Sousa, L.F. (2022). Agronomic performance of RR® soybean submitted to glyphosate application associated with a product based on bacillus subtilis. Agronomy, 12(12), 2940. doi: 10.3390/agronomy12122940.
[3] Cavaco, A.M., Utkin, A.B., da Silva, J.M., & Guerra, R. (2022). Making sense of light: The use of optical spectroscopy techniques in plant sciences and agriculture. Applied Sciences, 12(3), 997. doi: 10.3390/app12030997.
[4] Constantin, J., Braz, G.B.P., de Oliveira Júnior, R.S., de Andrade, C.L.L., Pereira, B.C.S., & Machado, F.G. (2020). Performance of RR soybean submitted to postemergence application of glyphosate with a foliar elicitor product. Arquivos do Instituto Biológico, 87, e0492019. doi: 10.1590/1808-1657000492019.
[5] Corrêa, M.J.P., & Alves, Р.L. (2010). Effects of herbicides application on photochemical efficiency in conventional and genetically modified soybeans. Ciência e Agrotecnologia, 34(5), 1136-1145. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/287238385.
[6] Cruz de Carvalho, R., Feijão, E., Matos, A.R., Cabrita, M.T., Utkin, A.B., Novais, S.C., Lemos, M.F.L., Caçador, I., Marques, J.C., Reis-Santos, P., Fonseca, V.F., & Duarte, B. (2022). Effects of glyphosate-based herbicide on primary production and physiological fitness of the macroalgae Ulva lactuca. Toxics, 10(8), 430. doi: 10.3390/toxics10080430.
[7] Gamayunova, V., & Panfilova, A. (2019). Formation of the top mass and the yield capacity of spring barley varieties depending on the optimization of nutrition in the southern Steppe of Ukraine. Scientific Horizons, 2, 19-26. doi: 10.332491/2663-2144-2019-75-2-19-26.
[8] Gomes, M.P., Smedbol, E., Chalifour, A., Hénault-Ethier, L., Labrecque, M., Lepage, L., Lucotte, M., & Juneau, P. (2014). Alteration of plant physiology by glyphosate and its by-product aminomethylphosphonic acid: An overview. Journal of Experimental Botany, 65(17), 4691-4703. doi: 10.1093/jxb/eru269.
[9] Han, L., Zhang, M., Du, L., Zhang, L., & Li, B. (2022). Effects of Bacillus amyloliquefaciens QST713 on photosynthesis and antioxidant characteristics of Alfalfa (Medicago sativa L.) under drought stress. Agronomy, 12(9), 2177. doi: 10.3390/agronomy12092177.
[10] Iummato, M.M., Fassiano, A., Graziano, M., dos Santos Afonso, M., Ríos de Molina, M.C., & Juárez, A.B. (2019). Effect of glyphosate on the growth, morphology, ultrastructure and metabolism of Scenedesmus vacuolatus. Ecotoxicology and Environmental Safety , 172, 471-479. doi: 10.1016/j.ecoenv.2019.01.083.
[11] Jain, G., & Sandhu, S.K. (2019). Radiation interception and growth dynamics in mustard under different dates of sowing. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 8, 499-504. Retrieved from https://www.phytojournal.com/archives/2019/vol8issue1S/PartL/SP-8-1-32-337.pdf.
[12] Kaeoboon, S., Suksungworn, R., & Sanevas, N. (2021). Toxicity response of Chlorella microalgae to glyphosate herbicide exposure based on biomass, pigment contents and photosynthetic efficiency. Plant Science Today, 8(2), 293-300. doi: 10.14719/pst.2021.8.2.1068.
[13] Korpita, H.M., & Shuvar, I.A. (2020). Influence of spring barley crop protection on photosynthetic activity. Theory and practice of development of agro-industrial complex and rural areas. In Materials of the international science-practice forum (pp. 194-196). Lviv.
[14] McCown, S., Barber, T., & Norsworth, J.K. (2018). Response of non-dicamba-resistant soybean to dicamba as influenced by growth stage and herbicide rate. Weed Technology, 32(5), 513-519. doi: 10.1017/wet.2018.64.
[15] Nosek, L., Semchonok, D., Boekema, E.J., Ilík, P., & Kouřil, R. (2017). Structural variability of plant photosystem II megacomplexes in thylakoid membranes. The Plant Journal, 89(1), 104-111. doi: 10.1111/tpj.13325.
[16] Panfilova, A., Korkhova, M., Gamayunova, V., Fedorchuk, M., Drobitko, A., Nikonchuk, N., & Kovalenko, O. (2019). Formation of photosynthetic and grain yield of spring barley (Hordeum vulgare L.) depend on varietal characteristics and plant growth regulators. Agronomy Research, 17(2), 608-620. doi: 10.15159/AR.19.099.
[17] Pradhan, S., Sehgal, V.K., Bandyopadhyay, K.K., Panigrahi, P., Parihar, C.M., & Jat, S.L. (2018). Radiation interception, extinction coefficient and use efficiency of wheat crop at various irrigation and nitrogen levels in semiarid location. Indian Journal of Plant Physiology, 23, 416-425. doi: 10.1007/s40502-018-0400-x.
[18] Shuvar, I., Korpita, H., Shuvar, А., Shuvar, B., Balkovskyi, V., Kosylovych, H., & Dudar, I. (2022). Relationship of potato yield and factors of influence on the background of herbological protection. Open Agriculture, 7(1), 920-925. doi: 10.1515/opag-2022-0153.
[19] Shuvar, I.A., & Korpita, H.M. (2023). Soybean yield depending on the herbicide protection system. Herbology in modern ecologically safe agriculture. In Materials of the 13th scientific and practical conference (pp. 86-88). Kyiv.
[20] Soares, C., Pereira, R., Martins, M., Tamagnini, P., Serôdio, J., Moutinho-Pereira, J., & Fidalgo, F. (2020). Glyphosate-dependent effects on photosynthesis of Solanum lycopersicum L. -an ecophysiological, ultrastructural and molecular approach. Journal of Hazardous Materials, 398, 122871. doi: 10.1016/j.jhazmat.2020.122871.
[21] Taylor, A.T., & Lai, E.P.C. (2021). Current state of laser-induced fluorescence spectroscopy for designing biochemical sensors. Chemosensors, 9(10), 275. doi: 10.3390/chemosensors9100275.
[22] The Convention on Biological Diversity. (2022). Retrieved from https://www.cbd.int/convention/.